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    小鼠白细胞介素10ELISA试剂盒Mouse IL-10 ELISA KIT
    货号:HM-06
    价格 :¥2800.00/1760.00.00
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    小鼠白细胞介素10定量分析酶联免疫检测试剂盒

     

    本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测小鼠血清、血浆或细胞培养上清液中的IL-1O浓度 。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整。如有产品包装破损或质量投拆 ,请在收到货一个月之内联系88bifa 。

     

    IL-1O简介:

    小鼠白介10(IL-10)是一个多效性的细胞因子 ,在抑制激活的Th1细胞 、NK细胞和单核/巨噬细胞产生IL-1, GM-CSF, TNF, IL-6, IL-8, IL-12 IFN-γ等细胞因子方面起重要的作用。同时在抑制巨噬细胞细胞毒活性性和B细胞、肥大细胞和T细胞的增殖和分化方面起重要的作用。

    能产生小鼠IL-10的细胞很多,包括激活的Th2细胞、幼稚的胸腺细胞、单核/巨噬细胞、角化细胞、B细胞和神经胶质细胞等。

    虽然人的IL-10对小鼠的细胞有活性  ,但小鼠的IL-10对人的细胞却没有活性 。小鼠IL-10与人IL-10无论从基因和氨基酸水平上,非常类似,与埃拔斯坦病毒基因组上一个开放读码框非常类似,这可能使得小鼠IL-10在病毒的感染过程中起重要的作用 。

     

    检测原理:

    本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中小鼠IL-10的浓度。小鼠IL-10捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时,其中的小鼠IL-10会与捕获抗体结合 ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗小鼠IL-10抗体后 ,抗小鼠IL-10抗体与小鼠IL-10接合 ,形成夹心的免疫复合物 ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去 。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素 。生物素与亲合素特异性结合 ,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来 ;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去 。最后加入显色剂 ,若样本中存在IL-10将会形成免疫复合物 ,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色  。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,小鼠IL-10浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线 ,对照未知样本中OD值 ,即可算出标本中IL-10浓度。

    小鼠IL-10定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

    组分

    规格(96T/48T)

    小鼠IL-10预包被板

    12条/6

    样本分析缓冲液

    5ml/3ml

    标准品稀释液

    10ml/5ml

    小鼠IL-10标准品

    4支/2支(冻干)*

    小鼠IL-10生物素化抗体

    10ml/5ml

    亲和素连接的HRP酶

    10ml/5ml

    浓缩洗涤液 20×

    30ml/15ml

    TMB底物

    10ml/5ml

    中止液

    5ml/3ml

    封板胶纸

    3/2

    说明书

    1

    标本收集:

    1.标本的收集请按下列流程进行操作;

    A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;

    B.血清标本应是自然凝固后,取上清 ,避免在冰箱中凝固血液 ;

    C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集;

    D.若待测样本不能及时检测,标本收集后请分装 ,冻存于-20℃ ,避免反复冻融。

    2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;

    3.标本应清澈透明 ,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。

    4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确。

    注:小鼠血清或血浆样本请用样本分析缓冲液做倍比稀释后再检测。

     

    注意事项:

    1.试剂盒请保存在28℃ 。

    2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶 ,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

    3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。

    4.底物请勿接触氧化剂和金属。

    5.加样时,请及时更换枪头,避免交叉污染。

    6.严禁混用不同批号的试剂盒组份 。

    7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要 ,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀 。

    8.室温反应,请严格控制在25~28℃。

    9.洗涤过程是至关重要的 ,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。

    10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。

    11.加样过程中避免气泡的产生 。

    12.血清和血浆标本的检测时 ,检测抗体的孵育时间应适当延长。

     

    检测前准备工作:

    1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25~28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。

    2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。

    3.如有5X准品稀释液 ,请按所需量用双蒸水或去离子水稀释(1份加4水)。

    4.标准品: 按标签复溶体积加入标准品稀释液复溶使IL-10终浓度达到2000pg/ml ,室温反应 ,请严格控制在25~28℃ ,静置10~15分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中。(标准曲线取七个点 ,最高浓度为2000 pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

     

    洗涤方法:

    自动洗板机或人工洗板:每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

     

    实验过程需自备的材料:

    1.不同规格的加样枪及相应的枪头;   

    2.酶标仪 ;

    3.自动洗板机;                     

    4.去离子水或双蒸水;

     

    操作步骤:

    1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数 ,取出所需板条放置在框架内 ,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封,保存于4℃ 。

    2.建议设置本底较正孔,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

    3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中,用封板胶纸封住反应孔 ,室温(25~28℃)孵育120分钟。对于血清或血浆标本 ,请加入50 ul样本分析缓冲液后加50 ul标本 ,如稀释量大,请将样本与样本分析缓冲液等量加入,不足部分用标准品稀释液补充至100ul。     

    4.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干 。

    5.加入生物素化抗体工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔,室温(25~28℃)孵育60分钟。    

    6.洗板5次 ,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    7.加入亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔 ,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。

    8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    9.加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。

    10.加入终止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值。

     

    结果判断:

    1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效,复孔的值平均后可作为测量值。

    2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值。

    3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标 ,OD值作纵坐标 ,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。

    4.若标本OD值高于标准曲线上限 ,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数 。

    典型数值和参考曲线

    浓度pg/ml

    典型OD1

    典型OD2

    OD平均值

    0

    0.1409

    0.1297

    0.1353

    62.5

    0.2348

    0.2516

    0.2432

    125

    0.3243

    0.3568

    0.34055

    250

    0.4645

    0.4754

    0.46995

    500

    0.7691

    0.7695

    0.7693

    1000

    1.2799

    1.2159

    1.2479

    2000

    2.0973

    1.883

    1.99015

     

    小鼠IL-1O参考标准曲线

    图片1.png 

    注意 :本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量。

     

    灵敏度,特异性和重复性:

    1.灵敏度:多次重复结果表明,最小检出量为8.3pg/ml 。

    2.特异性 :与小鼠IL-10 Sr,人IL-10、IL-10 sR等没有交叉反应。

    3.重复性:板内,板间变异系数均<10%.

     

    参考文献:

    Fiorentino, D.F. et al. (1989) J. Exp. Med. 170: 2081.

    Mosmann, T.R. (1994) Adv. Immunol. 56:1.

    Takebe, Y. et al. (1988) Mol. Cell. Biol. 8:466.

    Zdanov, A. et al. (1995) Structure 3:591.

    Rode, H.J. et al. (1993) Virus Genes 7:111.


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